Н.А. Филиппова1, М.Н. Макарова2, Т.Г. Калиничева3, Р.С. Киселёв4, Д.Ю. Акимов5

1–5 Акционерное общество "Научно-производственное объединение "ДОМ ФАРМАЦИИ"
(Ленинградская обл., Всеволожский район, г.п. Кузьмоловский, Россия)

1 filippova.na@doclinika.ru, 2 makarova.mn@doclinika.ru, 3 kalinicheva.tg@doclinika.ru, 4 kiselev.rs@doclinika.ru, 5 akimov.du@doclinika.ru

Постановка проблемы. Свиньи являются признанной тест-системой для проведения биомедицинских исследований. Результаты последнего метаанализа показали, что требуемый уровень анальгезии и анестезии свиньям предоставляется крайне редко. Пропофол и изофлуран привлекают своим быстрым реверсом из анестезии – с одной стороны и возможностью длительного введения и удержания анестезии – с другой. Добавление трамадола к данным препаратам улучшает анальгезию в полимодальной анестезии.

Цель работы – изучение влияния схемы трамадол-пропофол (болюсно)-пропофол (инфузионно) в сравнении с комбинацией трамадол-пропофол (болюсно)-изофлуран на основные физиологические показатели у карликовых свиней.

Результаты. Было установлено, что обе схемы анестезии позволяют обеспечить контролируемый наркоз уже спустя 15…40 с после болюсного введения пропофола. Анестезия продолжается на протяжении всего времени подачи пропофола (инфузионно) или изофлурана (ингаляционно). После прекращения подачи анестетиков реверсия после пропофола наступает через 26…29 мин, тогда как после прекращения подачи изофлурана – уже на 12-15-й минуте. Применение обеих схем анестезии снижает уровень сатурации, что требует контроля и дополнительной подачи кислорода. При их использовании отмечается статистически значимое сокращение частоты дыхательных движений, при этом применение комбинации с изофлураном вызывает наиболее сильное снижение по сравнению с комбинацией с пропофолом. Кроме того, оба протокола анестезии снижают артериальное давление и частоту сердечных сокращений, схоже влияют на показатели электрокардиограммы, а также не оказывают влияния на гематологический анализ крови. Комбинация с изофлураном не оказывает никакого влияния на биохимическую картину крови, тогда как схема с пропофолом статистически значимо снижает уровень щелочной фосфатазы.

Практическая значимость. Полученные результаты могут быть полезны в доклинических исследованиях для выполнения манипуляций легкой и средней степени тяжести.

Филиппова Н.А., Макарова М.Н., Калиничева Т.Г., Киселёв Р.С., Акимов Д.Ю. Влияние двух схем анестезии на витальные функции карликовых свиней // Технологии живых систем. 2026. T. 23. № 1. С. 79-86. DOI: https://doi.org/10.18127/j20700997-202601-08

1. Zeltner A., Pedersen H.D. Pigs and minipigs // The UFAW Handbook on the Care and Management of Laboratory and Other Research Animals. 2024. V. 32. P. 570–595. DOI:10.1002/9781119555278.ch32
2. Соколова В.С., Акимова М.А., Ярошенко И.Ю. Приучение яванских макак к экспериментальным процедурам // Технологии живых систем. 2024. Т. 21. № 4. С. 102–111. DOI: 10.18127/j20700997-202404-11
3. Mirra A., Gamez Maidanskaia E., Carmo L.P. et al. How is depth of anaesthesia assessed in experimental pigs? A scoping review // PloS one. 2023. V. 18. № 3. P. e0283511. DOI: 10.1371/journal.pone.0283511
4. Habek D., Miletić A.I., Medić F. What is the relationship between a gynecologist/obstetrician and the airway? // Acta Clinica Croatica. 2023. V. 62. P. 132–136. DOI: 10.20471/acc.2023.62.s1.17
5. Лосик Д.В., Белобородов В.В., Фишер Е.В. и др. Новая эндокардиальная би-электродная стимуляция правого предсердия у мини-свиней для создания модели фибрилляции предсердий // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2023. Т. 27. № 1. С. 47–53.
6. Daş G., Vernunft A., Görs S. et al. Acute effects of general anesthesia with propofol, pentobarbital or isoflurane plus propofol on plasma metabolites and hormones in adult pigs // Journal of Animal Science. 2016. V. 94. № 12. P. 5182–5191. DOI: 10.2527/jas.2016-1018
7. Акимов Д.Ю., Макарова М.Н., Филиппова Н.А. и др. Влияние пропофола и комбинации пропофола и изофлурана на витальные параметры карликовых свиней // Экспериментальная фармакология. 2024. Т. 4. № 29. С. 29. DOI: 10.17238/issn2541-8203.2024.4.8
8. Vullo C., Kim T.W., Meligrana M. et al. Pharmacokinetics of tramadol and its major metabolite after intramuscular administration in piglets // Journal of veterinary pharmacology and therapeutics. 2014. V. 37. № 6. P. 603–606. DOI: 10.1111/jvp.12133
9. Kajimoto M., Atkinson D.B., Ledee D.R. et al. Propofol compared with isoflurane inhibits mitochondrial metabolism in immature swine cerebral cortex // Journal of cerebral blood flow and metabolism: official journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 2014. V. 34. № 3. P. 514–521. DOI: 10.1038/jcbfm.2013.229
10. Carlsen M.F., Christoffersen B.O., Lindgaard R. et al. Implantation of telemetric blood pressure transmitters in Göttingen Minipigs: Validation of 24-h systemic blood pressure and heart rate monitoring and influence of anaesthesia // Journal of pharmacological and toxicological methods. 2022. V. 115. P. 107168. DOI: 10.1016/j.vascn.2022.107168
11. Mazaheri-Khameneh R., Sarrafzadeh-Rezaei F., Asri-Rezaei S., Dalir-Naghadeh B. Evaluation of clinical and paraclinical effects of intraosseous vs intravenous administration of propofol on general anesthesia in rabbits // Veterinary research forum : an international quarterly journal. 2012. V. 3. № 2. P. 103–109.
12. Oladimeji M., Desalu I., Adekola O. et al. A comparison of the effect of isoflurane and propofol on liver enzymes // Journal of West African College of Surgeons. 2022. V. 12. № 2. P. 28-33. DOI: 10.4103/jwas.jwas_69_22
13. Chen N., Qian J., Wu D. et al. Propofol mediates bone metastasis by regulating PC-derived exosomal miR-142-3p // Bulletin du cancer. 2023. V. 110. № 3. P. 265–274. DOI: 10.1016/j.bulcan.2023.01.008
14. Ray C.S., Singh B., Jena I. et al. Low Alkaline Phosphatase (ALP) In Adult Population an Indicator of Zinc (Zn) and Magnesium (Mg) Deficiency // Curr. Res. Nutr. Food Sci. 2017. V. 5. № 3. DOI: 10.12944/CRNFSJ.5.3.20
15. Тихонова Г.А., Котов О.В., Маркин А.А. Биомаркеры как инструменты медико-биологического мониторинга и контроля (Обзор литературы. Часть 2) // Технологии живых систем. 2023. Т. 20. № 4. С. 5–18. DOI: 10.18127/j20700997-202304-01
16. Тихонова Г.А., Котов О.В., Маркин А.А. Биомаркеры как инструмент медико-биологического мониторинга и контроля (Обзор литературы. Часть 1) // Технологии живых систем. 2023. Т. 20. № 2. С. 18–26. DOI: 10.18127/j20700997-202302-02