Е.В. Проскурнина1, З.В. Москвина2, М.М. Созарукова3, М.В. Фёдорова4, Д.А. Охоботов5, А.А. Камалов6

1 ФГБНУ «Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова» (Москва, Россия)

2 Городская поликлиника № 46 Департамента здравоохранения (Москва, Россия)

3 ФГБУН «Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова Российской академии наук» (Москва, Россия)

4 ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора» (Москва, Россия)

5,6 ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова» (Москва, Россия)

1 proskurnina@gmail.com, 2 gricukzv@yandex.ru, 3 s_madinam@bk.ru, 4 theklazontag@yandex.ru, 5 14072003m@gmail.com, 6 armais.kamalov@rambler.ru

Постановка проблемы. При бактериальном простатите секрет предстательной железы является более информативным клиническим материалом для оценки активности воспаления, чем кровь.

Цель работы – изучение оксидативной активности нейтрофилов секрета предстательной железы у пациентов с хроническим бактериальным простатитом.

Результаты. В исследование были включены 13 пациентов 29–70 лет с хроническим бактериальным простатитом в стадии ремиссии, обострения и латентным течением. При помощи комплексного протокола, основанной на методе активированной кинетической хемилюминесценции с использованием нескольких активаторов и стимулов, оценена оксидативная активность нейтрофилов секрета предстательной железы. Оксидативная активность нейтрофилов возрастала в ряду ремиссия < латентное течение < обострение, при этом зависела от природы инфицирующего агента.

Воспалительный процесс в предстательной железе характеризуется высокой оксидативной активностью нейтрофилов секрета предстательной железы, зависящей от активности воспаления и природы возбудителя.

Практическая значимость. Оксидативная активность нейтрофилов секрета простаты имеет диагностическое значение при оценке выраженности бактериального воспаления в предстательной железе; наиболее информативным является протокол люминол-активированной хемилюминесценции с использованием форбол-12-миристат-13-ацетата в качестве стимула.

Проскурнина Е.В., Москвина З.В., Созарукова М.М., Фёдорова М.В., Охоботов Д.А., Камалов А.А. Оксидативная активность нейтрофилов в секрете предстательной железы при бактериальном простатите // Технологии живых систем. 2024. T. 21.
№ 4. С. 42-53. DOI: https://doi.org/10.18127/j20700997-202404-05

1. Davis N.G., Silberman M. Bacterial Acute Prostatitis // StatPearls.Treasure Island (FL). 2022.
2. Khan F.U., Ihsan A.U., Khan H.U., Jana R., Wazir J., Khongorzul P., Waqar M., Zhou X. Comprehensive overview of prostatitis // Biomed Pharmacother. 2017. V. 94. P. 1064-1076.
3. Krieger J.N., Nyberg L. Jr., Nickel J.C. NIH consensus definition and classification of prostatitis // JAMA. 1999. V. 282. № 3. P. 236-237.
4. Alshahrani S., McGill J., Agarwal A. Prostatitis and male infertility // J. Reprod Immunol. 2013. V. 100. № 1. P. 30-36.
5. Xiong S., Liu X., Deng W., Zhou Z., Li Y., Tu Y., Chen L., Wang G., Fu B. Pharmacological Interventions for Bacterial Prostatitis // Front. Pharmacol. 2020. V. 11. P. 504.
6. Pasqualotto F.F., Sharma R.K., Potts J.M., Nelson D.R., Thomas A.J., Agarwal A. Seminal oxidative stress in patients with chronic prostatitis // Urology. 2000. V. 55. № 6. P. 881-885.
7. Ахмед А.А.М., Аисса А. Аит. Роль окислительного стресса в мужском бесплодии у жителей Йемена // Технологии живых систем. 2020. Т. 17. № 4. С. 86–89. DOI: 10.18127/j20700997-202004-10
8. Zhou J.F., Xiao W.Q., Zheng Y.C., Dong J., Zhang S.M. Increased oxidative stress and oxidative damage associated with chronic bacterial prostatitis // Asian J. Androl. 2006. V. 8. № 3. P. 317-323.
9. Kullisaar T., Turk S., Punab M., Korrovits P., Kisand K., Rehema A., Zilmer K., Zilmer M., Mandar R. Oxidative stress in leucocytospermic prostatitis patients: preliminary results // Andrologia. 2008. V. 40. № 3. P. 161-172.
10. Potts J.M., Pasqualotto F.F. Seminal oxidative stress in patients with chronic prostatitis // Andrologia. 2003. V. 35. № 5. P. 304-308.
11. Paulis G. Inflammatory mechanisms and oxidative stress in prostatitis: the possible role of antioxidant therapy // Res. Rep. Urol. 2018. V. 10. P. 75-87.
12. Ludwig M. Diagnosis and therapy of acute prostatitis, epididymitis and orchitis // Andrologia. 2008. V. 40. № 2. P. 76-80.
13. Su Z.T., Zenilman J.M., Sfanos K.S., Herati A.S. Management of Chronic Bacterial Prostatitis // Curr. Urol. Rep. 2020. V. 21. № 7. P. 29.
14. Zhu J., Yang C., Dong Z., Li L. The value of neutrophil elastase in diagnosis of type III prostatitis // Urol. J. 2014. V. 11. № 3. P. 1666-1672.
15. Chen H., Li M.Y., Xu S. D., Zhu C.C., Zhang L. [Content of neutrophil elastase in EPS and seminal plasma: A combined predictor in the diagnosis of type IIIA prostatitis with secondary infertility] // Zhonghua Nan Ke Xue. 2017. V. 23. № 9. P. 786-792.
16. Wang F., Ge A., Dai A., Wang Z., Mo Z. Analysis of Prostate-Specific Antigen-Related Indexes, Neutrophil-to-Lymphocyte Ratio in Patients with Concurrent Benign Prostatic Hyperplasia and Histologic Prostatitis // Clin. Lab. 2020. V. 66. № 1.
17. Ahn H.K., Koo K.C., Chung B.H., Lee K.S. Comparison of the delta neutrophil index with procalcitonin, erythrocyte sedimentation rate, and C-reactive protein as predictors of sepsis in patients with acute prostatitis // Prostate Int. 2018. V. 6. № 4. P. 157-161.
18. Иштулин А.Ф., Короткова Н.В., Матвеева И.В., Иштулина С.Л., Минаев И.В., Полякова П.М. Гомоцистеин как предиктор снижения репродуктивной функции у мужчин // Технологии живых систем. 2022. T. 19. № 3. С. 55-62. DOI: https://doi.org/ 10.18127/j20700997-202203-06
19. Krainii P.A., Ibishev K.S. [Electronic microscopy assessment of immunological disorders in the secret of the prostate in patients with chronic recurrent bacterial prostatitis] // Urologiia. 2021. № 4. P. 68-72.
20. Шангичев А.В. Оксид азота в крови, секрете простаты и эякуляте при терапии хронического абактериального простатита/синдрома хронической тазовой боли категории IIIa // Казанский медицинский журнал. 2009. T. 90. № 1. C. 69-71.
21. Шангичев А.В. Определение спектра высших жирных кислот секрета простаты у больных с воспалительной формой синдрома хронической тазовой боли (СХТБ IIIA) методом газожидкостной хроматографии // Кубанский научный медицинский вестник. 2008. № 6. C. 98-99.
22. Шангичев А.В. Состояние ферментной антиоксидантной системы крови, секрета простаты и эякулята при стандартном лечении хронического абактериального простатита // Вестник РУДН. 2009. № 3. C. 71-75.
23. Черногубова Е.А. Маркеры воспаления в крови и секрете простаты пациентов с синдромом хронической тазовой боли // Известия вузов, Северо-Кавказский регион: Естественные науки. 2011. № 6. C. 123-136.
24. Brestel E.P. Co-oxidation of luminol by hypochlorite and hydrogen peroxide implications for neutrophil chemiluminescence // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1985. V. 126. № 1. P. 482-488.
25. Gyllenhammar H. Lucigenin chemiluminescence in the assessment of neutrophil superoxide production // J. Immunol. Methods. 1987. V. 97. № 2. P. 209-213.
26. Dang P.M., Rais S., Hakim J., Perianin A. Redistribution of protein kinase C isoforms in human neutrophils stimulated by formyl peptides and phorbol myristate acetate // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1995. V. 212. № 2. P. 664-672.
27. Dahlgren C. Analysis of luminol-dependent chemiluminescence from granule depleted neutrophil cytoplasts reveals two different light-emitting mechanisms // J. Biolumin. Chemilumin. 1988. V. 2. № 1. P. 25-33.
28. Caldefie-Chezet F., Walrand S., Moinard C., Tridon A., Chassagne J., Vasson M.P. Is the neutrophil reactive oxygen species production measured by luminol and lucigenin chemiluminescence intra or extracellular? Comparison with DCFH-DA flow cytometry and cytochrome c reduction // Clin. Chim. Acta. 2002. V. 319. № 1. P. 9-17.
29. Alekseev A.V., Proskurnina E.V., Vladimirov Y.A. Determination of Antioxidants by Sensitized Chemiluminescence Using 2,2'-azo-bis(2-amidinopropane) // Moscow University Chemistry Bulletin. 2012. V. 67. № 3. P. 127-132.
30. Zhang R., Liu C., Yang L., Ji T., Zhang N., Dong X., Chen X., Ma J., Gao W., Huang S., Chen L. NOX2-derived hydrogen peroxide impedes the AMPK/Akt-mTOR signaling pathway contributing to cell death in neuronal cells // Cell Signal. 2022. V. 94. P. 110330.
31. Dallegri F., Ottonello L. Tissue injury in neutrophilic inflammation // Inflamm. Res. 1997. V. 46. № 10. ‒ P. 382-391.
32. Dahlgren C., Karlsson A. Respiratory burst in human neutrophils // J. Immunol. Methods. 1999. V. 232. № 1-2. P. 3-14.
33. Dacheux D., Toussaint B., Richard M., Brochier G., Croize J., Attree I. Pseudomonas aeruginosa cystic fibrosis isolates induce rapid, type III secretion-dependent, but ExoU-independent, oncosis of macrophages and polymorphonuclear neutrophils // Infect. Immun. 2000. V. 68. № 5. P. 2916-2924.
34. Mencacci A., Cenci E., Repetto A., Mazzolla R., Bistoni F., Aversa F., Aloisi T., Vecchiarelli A. A multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa isolate from a lethal case of sepsis induces necrosis of human neutrophils // J. Infect. 2006. V. 53. № 6. P. e259-264.
35. Kuznetsova M.V., Maslennikova I.L., Nekrasova I.V., Shirshev S.V. Effect of mixed culture supernatants of Pseudomonas aeruginosa and Escherichia coli on apoptosis, necrosis, and oxidative activity of neutrophils // Dokl. Biol. Sci. 2015. V. 461. P. 112-115.
36. Vareechon C., Zmina S.E., Karmakar M., Pearlman E., Rietsch A. Pseudomonas aeruginosa Effector ExoS Inhibits ROS Production in Human Neutrophils // Cell Host Microbe. 2017. V. 21. № 5. P. 611-618 e5.
37. Capsoni F., Minonzio F., Ongari A.M., Bonara P., Guidi G., Zanussi C. Increased expression of C3b and C3bi receptors on human neutrophils and monocytes induced by a glycoprotein extract from Klebsiella pneumoniae (RU41740) // Int. J. Immunopharmacol. 1991. V. 13. № 2-3. P. 227-233.
38. Villa-Ambriz J., Rodriguez-Orozco A.R., Bejar-Lozano C., Cortes-Rojo C. The increased expression of CD11c and CD103 molecules in the neutrophils of the peripheral blood treated with a formula of bacterial ribosomes and proteoglycans of Klebsiella pneumoniae // Arch. Bronconeumol. 2012. V. 48. № 9. P. 316-319.
39. Birnberg-Weiss F., Castillo L.A., Pittaluga J.R., Martire-Greco D., Gomez S.A., Landoni V.I., Fernandez G.C. Modulation of neutrophil extracellular traps release by Klebsiella pneumoniae // J. Leukoc. Biol. 2021. V. 109. № 1. P. 245-256.
40. Yang G., Xu Q., Chen S. Neutrophil function in hypervirulent Klebsiella pneumoniae infection // Lancet Microbe. 2022. V. 3. № 4. P. e248.