350 руб
Журнал «Технологии живых систем» №5 за 2011 г.
Статья в номере:
ВЛИЯНИЕ ГЛИКОЗИДАЗНЫХ И ГЛИКОЗАМИНОГЛИКАНОВЫХ ПРОИЗВОДНЫХ НА ИШЕМИЧЕСКОЕ ПОВРЕЖДЕНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ
Ключевые слова: микроциркуляция гликокаликс гиалуронидаза хондроитинсульфат лазерная доплеровская флоуметрия вейвлет-спектры
Авторы:
Аскар Дамирович Турашев - мл. науч. сотрудник, лаборатория биохимической инженерии, Институт экспериментальной кардиологии, Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития (Москва). E-mail: turashev@yandex.ru Андрей Александрович Федорович - к.м.н., ст. науч. сотрудник, отдел новых методов функциональной диагностики, Институт клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова, Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития. E-mail: faa-micro@yandex.ru Елена Георгиевна Тищенко - науч. сотрудник, лаборатория биохимической инженерии, Институт экспериментальной кардиологии, Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития. E-mail: labbiocheng@cardio.ru Анатолий Николаевич Рогоза - д.м.н., профессор, руководитель отдела новых методов функциональной диагностики, Институт клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова, Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития. E-mail: anrogoza@cardio.ru Александр Васильевич Максименко - д.б.н., профессор, руководитель лаборатории биохимической инженерии, Институт экспериментальной кардиологии, Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития. E-mail: alexmak@cardio.ru
Аннотация:
Для определения участия эндотелиального гликокаликса в ишемическом повреждении системы микроциркуляции предложен информативный ферментный тест с использованием нативной и модифицированной хондроитинсульфатом гиалуронидазы. В условиях постишемической перфузии ко-нечности крысы продемонстрировано, что нативный фермент при превентивном введении ускоряет восстановление исходного уровня кровотока, а модифицированный фермент выраженно инактивируется продуктами деградации гликокаликса. Результаты лазерной доплеровской флоуметрии, полученные при разных схемах введения исследованных средств, свидетельствуют об участии гликокаликса в нарушениях микроциркуляции.
Страницы: 29-42
Список источников
  1. Maes A., Van de Werf F., Nuyts J., Bormans G., Desmet W., Mortelmans L. Impaired myocardial tissue perfusion early after successful thrombolysis. Impact on myocardial flow, metabolism, and function at late follow-up // Circulation. 1995. V. 92. № 8. P. 2072-2078.
  2. Roe M.T., Ohman E.M., Maas A.C., Christenson R.H., Mahaffey K.W., Granger C.B., Harrington R.A., Califf R.M., Krucoff M.W. Shifting the open-artery hypothesis downstream: the quest for optimal reperfusion // J. Am. Coll. Cardiol. 2001. V. 37. № 1. P. 9-18.
  3. Miura T., Miki T. Limitation of myocardial infarct size in the clinical setting: current status and challenges in translating animal experiments into clinical therapy // Basic Res. Cardiol. 2008. V. 103. № 6. P. 501-513.
  4. Wilson G.J., Diaz R.J. The myocardial no-reflow phenomenon: role of deltaPKC // Cardiovasc. Res. 2007. V. 73. № 4. P. 623-625.
  5. Abbate A., Bussani R., Sinagra G., Barresi E., Pivetta A., Perkan A., Hoke N.H., Salloum F.N., Kontos M.C., Biondi-Zoccai G.G., Vetrovec G.W., Sabbadini G., Baldi F., Silvestri F., Kukreja R.C., Baldi A. Right ventricular cardiomyocyte apoptosis in patients with acute myocardial infarction of the left ventricular wall // Am. J. Cardiol. 2008. V. 102. № 6. P. 658-662.
  6. Rehm M., Bruegger D., Christ F., Conzen P., Thiel M., Jacob M., Chappell D., Stoeckelhuber M., Welsch U., Reichart B., Peter K., Becker B.F.Shedding of the endothelial glycocalyx in patients undergoing major vascular surgery with global and regional ischemia // Circulation. 2007. V. 116. № 17. P. 1896-1906.
  7. Bruegger D., Rehm M., Jacob M., Chappell D., Stoeckelhuber M., Welsch U., Conzen P., Becker B.F. Exogenous nitric oxide requires an endothelial glycocalyx to prevent postischemic coronary vascular leak in guinea pig hearts // Crit. Care. 2008. V. 12. № 3. P. R73-R83.
  8. Brevetti G., Schiano V., Chiariello M. Endothelial dysfunction: a key to the pathophysiology and natural history of peripheral arterial disease - // Atherosclerosis. 2008. V. 197. № 1. P. 1-11.
  9. Максименко А.В., Турашев А.Д. Гликокаликс и его фрагменты в функционировании микроциркуляции // Регионарное кровообращение микроциркуляции. 2009. Т. 8. № 3. С. 4-13.
  10. Максименко А.В., Турашев А.Д., Тищенко Е.Г. Подходы к регуляции углеводного покрытия люминальной поверхности сосудистой стенки для коррекции патофизиологических процессов // Молекулярная медицина. 2008. № 2. С. 12-17.
  11. Максименко А.В., Щечилина Ю.В., Тищенко Е.Г. Гликозаминогликановое микроокружение гиалуронидазы в регуляции ее эндогликозиданой активности // Биохимия. 2003. Т. 68. № 8. С. 1055-1062.
  12. Турашев А.Д., Тищенко Е.Г., Максименко А.В. Гликирование нативной и модифицированной хондроитинсульфатом гиалуронидазы моносахаридами // Молекулярная медицина. 2009. № 3. С. 51-56.
  13. Турашев А.Д., Тищенко Е.Г., Максименко А.В. Неферментативное гликозилирование нативной и модифицированной хондроитинсульфатом гиалуронидазы дисахаридами // Молекулярная медицина. 2009. № 6. С. 50-55.
  14. Турашев А.Д., Тищенко Е.Г., Максименко А.В. Электростатические взаимодействия при гликировании гиалуронидазных производных N-ацетилгексозаминами // Биомедицинская химия. 2011. (в печати).
  15. Максименко А.В. Эффекты гликозаминогликанов в сосудистых событиях // Химико-фарма­цевтический журнал. 2008. Т. 42. № 10. С. 3-13.
  16. Максименко А.В., Щечилина Ю.В., Тищенко Е.Г. Модифицированная декстраном гиалуронидаза резистентна к ингибированию гепарином // Биохимия. 2001. Т. 66. № 4. С. 563-572.
  17. Humeau A., Koïtka A., Abraham P., Saumet J.L., L'Huillier J.P. Time-frequency analysis of laser Doppler flowmetry signals recorded in response to a progressive pressure applied locally on anaesthetized healthy rats // Phys. Med. Biol. 2004. V. 49. № 5. P. 843-857.
  18. Li Z., Tam E.W., Kwan M.P., Mak A.F., Lo S.C., Leung M.C. Effects of prolonged surface pressure on the skin blood flowmotions in anaesthetized rats--an assessment by spectral analysis of laser Doppler flowmetry signals // Phys. Med. Biol. 2006. V. 51. № 10. P. 2681-2694.
  19. Bijnens B., Sutherland G.R. Myocardial oedema: a forgotten entity essential to the understanding of regional function after ischaemia or reperfusion injury // Heart. 2008. V. 94. № 9. P. 1117-1119.
  20. Jaffe R., Charron T., Puley G., Dick A., Strauss B.H. Microvascular obstruction and the no-reflow phenomenon after percutaneous coronary intervention // Circulation. 2008. V. 117. № 24. P. 3152-3156.
  21. Hudetz A.G., Wood J.D., Biswal B.B., Krolo I., Kampine J.P. Effect of hemodilution on RBC velocity, supply rate, and hematocrit in the cerebral capillary network // J. Appl. Physiol. 1999. V87. № 2. P. 505-509.
  22. Крупаткин А.И., Сидоров В.В. Лазерная допплеровская флоуметрия микроциркуляции крови. М.: Медицина. 2005. 254 с.
  23. Funk W., Intaglietta M. Spontaneous arteriolar vasomotion // Prog. Appl. Microcirc. 1983. V. 3. P. 66-82.
  24. Kastrup J., Bulow J., Lassen N.A. Vasomotion in human skin before and after local heating recorder with laser Doppler flowmetry // Int. J. Microcirc. 1989. V.8. P. 205-215.
  25. Крупаткин А.И. Динамический колебательный контур регуляции капиллярной гемодинамики // Физиология человека. 2007. Т. 33. № 5. С. 95-103.
  26. Kvernmo H.D., Stefanovska A., Kirkeboen K.A. et al. Oscillations in the human cutaneous blood perfusion signal modified by endothelium-dependent and endothelium-independent vasodilators // Microvasc. Res. 1999. V. 57. P. 298-309.
  27. Mulivor A.W., Lipowsky H.H. Inflammation- and ischemia-induced shedding of venular glycocalyx // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2004. V. 286. № 5. P. H1672-H1680.
  28. Platts S.H., Linden J., Duling B.R. Rapid modification of the glycocalyx caused by ischemia-reperfusion is inhibited by adenosine A2A receptor activation // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2003. V. 284. № 6. P. H2360-H2367.
  29. Stevens A.P., Hlady V., Dull R.O. Fluorescence correlation spectroscopy can probe albumin dynamics inside lung endothelial glycocalyx // Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2007. V. 293. № 2. P. L328-L335.
  30. Cabrales P., Vázquez B.Y., Tsai A.G., Intaglietta M.Microvascular and capillary perfusion following glycocalyx degradation // J. Appl. Physiol. 2007. V. 102. № 6. P. 2251-2259.
  31. Tarbell J.M. Shear stress and the endothelial transport barrier // Cardiovasc. Res. 2010. V. 87. P. 320-330.
  32. Vanhoutte P.M. How we learned to say NO // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2009. V. 29. № 8. P. 1156-1160.
  33. Edwards D.H., Li Y., Griffith T.M. Hydrogen peroxide potentiates the EDHF phenomenon by promoting endothelial Ca2+ mobilization // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2008. V. 28. № 10. P. 1774-1781.
  34. Liu Y., Gutterman D.D. Endothelial cytoskeletal elements are critical for flow-mediated dilation in human coronary arterioles // Med. Biol. Eng. Comput. 2008. V. 46. № 5. P. 469-478.
  35. Graier W.F., Hecker M. Endothelial H2O2: a bad guy turning good - // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2008. V. 28. № 10. P. 1691-1693.
  36. Maksimenko A.V. Experimental antioxidant biotherapy for protection of the vascular wall by modified forms of superoxide dismutase and catalase // Curr. Pharm. Des. 2005. V. 11. № 16. P. 2007-2016.
  37. Camaioni A., Hascall V.C., Yanagishita M., Salustri A. Effects of exogenous hyaluronic acid and se-
    rum on matrix organization and stability in the mouse cumulus cell-oocyte complex // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. № 27. P. 20473-20481.
  38. Becker B.F., Chappell D., Bruegger D., Annecke T., Jacob M. Therapeutic strategies targeting the endothelial glycocalyx: acute deficits, but great potential // Cardiovasc. Res. 2010. V. 87. № 2. P. 300-310.