350 руб
Журнал «Технологии живых систем» №6 за 2016 г.
Статья в номере:
Влияние ингибирования метаболического каскада арахидоновой кислоты на последующий профиль экспрессии циклооксигеназ и простагландинсинтаз в глазу крысы в конканавалиновой модели воспаления
Ключевые слова: сетчатка хориоидея стекловидное тело воспаление конканавалин А циклооксигеназы простагландинсинтазы
Авторы:
Анна Александровна Дементьева - студентка, факультет фундаментальной медицины, МГУ им. М.В. Ломо-носова E-mail: a.dementyeva@yandex.ru Андрей Александрович Кибитов - студент, факультет фундаментальной медицины, МГУ им. М.В. Ломоносова Алексей Константинович Ердяков - аспирант, кафедра физиологии и общей патологии, факультет фундаментальной медицины, МГУ им. М.В. Ломоносова Александр Владимирович Балацкий - к.м.н., врач клинико-лабораторной диагностики, Медицинский научно-образовательный центр, МГУ им. М.В. Ломоносова; мл. науч. сотрудник, лаборатория генных и клеточных техно-логий, факультет фундаментальной медицины, МГУ им. М.В. Ломоносова Светлана Анатольевна Гаврилова - к.б.н., доцент, факультет фундаментальной медицины, МГУ им. М.В. Ломоносова
Аннотация:
В результате проведенного исследования путем иммуногистохимического анализа впервые показано наличие положительной обратной связи между продуктами циклооксигеназного звена метаболизма арахидоновой кислоты и продукцией циклооксигеназы-2 в хориоидее и некоторых слоях сетчатки. Такая связь отчетливо видна на первые сутки после инициации воспаления. В то же время в результате проведения полимерной цепной реакции с обратной транскрипцией в реальном времени выявлено, что экспрессия мРНК генов COX-1 и COX-2 в хориоидее, сетчатке и стекловидном теле мало отличается между экспериментальными группами по сравнению с продукцией этих белков отдельными слоями сетчатки, что свидетельствует о тонкой регуляции процесса внутриглазного воспаления.
Страницы: 14-23
Список источников

 

  1. Vichai V., Suyarnsesthakorn C., Pittayakhajonwut D., Sriklung K., Kirtikara K. Positive feedback regulation of COX-2 expression by prostaglandin metabolites // Inflammation Research. 2005. V. 54. P. 163-172.
  2. Ердяков А.К., Тихонович М.В., Ржавина Е.М., Гаврилова С.А. Характеристики сетчатки при развитии пролиферативной витрео­ре­ти­но­патии у крыс после внутриглазной инъекции конканавалина А и диспазы // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2015. Т. 101. № 5. С. 572-585.
  3. Radi Z.A., Render J.A. The Pathophysiologic Role of Cyclo-Oxygenases in the Eye // Journal of Ocular Pharmacology and Therapeutics. 2008. V. 24. № 2. P. 141-151.
  4. Gilroy D.W., Colville-Nash P.R., Willis D., Chivers J., Paul-Clark M.J., Willoughby D.A. Inducible cyclooxygenase may have anti-inflam­matory properties // Nature Medicine. 1999. V. 5. № 6. P. 698-701.
  5. Chennamaneni S.R., Bohner A., Bernhisel A., Ambati B.K. Pharmacokinetics and Efficacy of Bioerodible Dexamethasone Implant in Concanavalin A-induced Uveitic Cataract Rabbit Model // Pharm Res. 2014. V. 31. № 11. P. 3179-3190.
  6. Gwon A., Mantras C., Gruber L., Cunanan C. Concanavalin A-Induced Posterior Subcapsular Cataract: A New Model of Cataractogenesis // Investigative Ophthalmology & Visual Science. 1993. V. 34. № 13. P. 3483-3488.
  7. Er H., Uzmez E., Dogan N., Cumhurcu T. The Anti-inflammatory Effects of NG-Nitro L-Argi­nine (L-NAME) and Steroid in Concanavalin A-Induced Uveitis // Tr. J. of Medical Sciences. 1999. V. 29. P. 233-236.
  8. Baneke A.J., Lim K. Sheng, Stanford M. The Pathogenesis of Raised Intraocular Pressure in Uveitis // Current Eye Research, Early Online. 2015. P. 1-13.
  9. Maihofner C., Schlotzer-Schrehardt U., Guhring H., Zeilhofer H.U., Naumann G., Pahl A., Mardin C., Tamm E., Brune K. Expression of Cyclo­oxygen­nase-1 and -2 in Normal and Glaucomatous Human Eyes // IOVS. 2001. V. 42. № 11.
  10. Kaufmann U., Diedrichs-Mohring M., Wildner G. Dynamics of Intraocular IFN-g, IL-17 and IL-10-Producing Cell Populations during Relapsing and Monophasic Rat Experimental Autoimmune Uveitis // PLOS ONE. 2012. V. 7. P. 1-11.
  11. Deng W-G., Alberto J., Monter A.J., Wu K.K. Interferon-γ Suppresses Cyclooxygenase-2 Promoter Activity by Inhibiting C-Jun and C/EBPβ Binding // Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2007. V. 27. P. 1752-1759.
  12. Barrios-Rodiles M., Chadee K. Novel Regulation of Cyclooxygenase-2 Expression and Prostaglan-din E 2 Production by IFN- γ in Human Macrophages // The Journal of Immunology. 1998. V. 161. P. 2441-2448.
  13. Takai E., Tsukimoto M., Kojima S. TGF-β1 Downregulates COX-2 Expression Leading to Decrease of PGE2 Production in Human Lung Cancer A549 Cells, Which Is Involved in Fibrotic Response to TGF-β1 // PLOS ONE. 2013. V. 8. P. 1-13.
  14. Kapin M.A., Yanni J.M., Brady M.T., McDonough T.J., Flanagan J.G., Rawji M.H., Dahlin D.C., Sanders M.E., Gamache D.A. Inflammation-Mediated Retinal Edema in the Rabbit Is Inhibited by Topical Nepafenac // Inflammation. 2003. V. 27. № 5. P. 281-291.
  15. Brock T.G., McNish R.W., Peters-Golden M. Arachidonic Acid Is Preferentially Metabolized by Cyclooxygenase-2 to Prostacyclin and Prosta­glan­din E2 // The Journal Of Biological Chemistry. 1999. V. 274. № 17. P. 11660-11666.
  16. Зильфян А.А. Сдвиги в содержании проста­глан­динов Е2 во внутриглазной  жидкости пациентов с сенильными и осложненными катарактами // Офтальмохирургия. 2013. № 3. С. 86-90.
  17. Gerashchenko D., Beuckmann C.T., Kanaoka Y., Eguchi N., Gordon W.C., Urade Y., Bazan N.G., Hayaishi O. Dominant Expression of Rat Pros­tanoid DP Receptor mRNA in Leptomeninges, Inner Segments of Photoreceptor Cells, Iris Epithelium, and Ciliary Processes // Journal of Neurochemistry. 1998. V. 71. P. 937-945. 
  18. Gerashchenko D., Beuckmann C.T., Marcheselli V.L., Gordon W.C., Kanaoka Y., Eguchi N., Urade Y., Hayaishi O., Bazan N.G. Localization of Lipocalin-Type Prostaglandin D Synthase (Trace β) in Iris,Ciliary Body, and Eye Fluids // IOVS. 1998. V. 39. № 1. P. 198-203.
  19. Hirai H., Tanaka K., Yoshie O., Ogawa K., Kenmotsu K., Takamori Y., Ichimasa M., Sugamura K., Nakamura M., Takano S., Nagata K. Prostaglandin D2 Selectively Induces Chemotaxis in T Helper Type 2 Cells, Eosinophils, and Basophils via Seven-Transmembrane Receptor CRTH2 // J. Exp. Med. 2001. V. 193. № 2. P. 255-261.
  20. Goh Y., Nakajima M., Azuma I, Hayaisht O. Prostaglandin D2 reduces intraocular pressure // British Journal of Ophthalmology. 1988. V. 72. P. 461-464.