350 руб
Журнал «Технологии живых систем» №2 за 2014 г.
Статья в номере:
Лечебное и превентивное действие биферментного препарата супероксиддисмутаза-хондроитинсульфат-каталаза при эндотоксическом шоке
Ключевые слова: липополисахарид окислительный стресс эндотоксический шок супероксиддисмутаза каталаза биферментный конъюгат супероксиддисмутаза-хондроитинсульфат-каталаза антиоксидантная энзимотерапия
Авторы:
А.В. Максименко - д.б.н., профессор, руководитель лаборатории биохимической инженерии, Институт экспериментальной кардиологии, ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Министерства здравоохранения РФ (Москва). E-mail: alexmak@cardio.ru А.В. Ваваева - лаборант-исследователь, лаборатория биохимической инженерии, Институт экспериментальной кардиологии, ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Министерства здравоохранения РФ. E-mail: labbiocheng@cardio.ru А.А. Абрамов - мл. науч. сотрудник, лаборатория экспериментальной патологии сердца, Институт экспериментальной кардиологии, ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Министерства здравоохранения РФ. E-mail: ferk_88@list.ru А.В. Ваваев - к.б.н., науч. сотрудник, лаборатория биохимической инженерии, Институт экспериментальной кардиологии, ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Министерства здравоохранения РФ. E-mail: alex.vavaev@yandex.ru В.Л. Лакомкин - к.м.н., вед. науч. сотрудник, лаборатория экспериментальной патологии сердца, Институт экспериментальной кардиологии, ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Министерства здравоохранения РФ. E-mail: lakomkin@cardio.ru
Аннотация:
Внутривенное введение крысам биферментного конъюгата супероксиддисмутаза-хондроитинсульфат-каталаза (СОД-ХС-КАТ) в превентивном и лечебном режиме при развитии эндотоксического шока от действия липополисахарида обнаружило влияние СОД-ХС-КАТ на цитокиновую фазу поражения и его отдаленные поздние стадии. Показан лечебный эффект биферментного конъюгата, достоверно повышающего выживаемость животных при эндотоксическом шоке.
Страницы: 35-43
Список источников

 

  1. Cuzzocrea S., Mazzon E., Di Paola R., Esposito E., Macarthur H., Matuschak M., Salvemini D. A role for nitric oxide-mediated peroxynitrite formation in a model of endotoxin-induced shock // J. Pharmacol. Experim. Ther. 2006. V. 319. P. 73-81.
  2. Tiruppathi C., Shimizu J., Miyawaki-Shimizu K., Vogel S.M., Bair A.M., Minshell R.D., Predesen D., Malik A.B. Role of NF-kappaB-dependent caveolin-1 expression in the mechanism of increased endothelial permeability induced by lipopolysaccharide // J. Biol. Chem. 2008. V. 283. № 7. P. 4210-4218.
  3. Netea M.G., Fantuzzi G., Kullberg B.J., Stuyt R.J.L., Pulido E.J., McIntyre R.C. Jr., Joosten L.A.B., Van der Meer J.W.M., Dinarello C.A. Neutralization of IL-18 reduces neutrophil tissue accumulation and protects mice against lethal Escherichia coli and Salmonella typhimurium endotoxemia // J. Immunol. 2000. V. 164. P. 2644-2649.
  4. Sakao Y., Takeda K., Tsutsui H., Kaisho T., Nomura F., Okamura H., NakanishiK., Akira S. IL-18 - deficient mice are resistant to endotoxin-induced liver injury but highly susceptible to endotoxin shock // Int. Immunol. 1999. V. 11. P. 471-480.
  5. Van Denren M., Dofferhoff A.S.M., Van der Meer J.W.M. Cytokines and the response to infections // J. Pathol. 1992. V. 168. P. 349-356.
  6. Gandhirajan R.K., Meng S., Chandramoorthy H.C., Mallilankaraman K., Mancarella S., Gao H., Razmpour R., Yang X-F., Houser S.R., Chen J., Koch W.J., Wang H., Soboloff J., Gill D.L., Madesh M. Blockade of NOX2 and STIM1 signaling limits lipopolysaccharide-induced vascular inflammation // J. Clin. Invest. 2013. V. 123. № 2. P. 887-902.
  7. Kowaltowski A.J., Vercesi A.E. Mitochondrial damage induced by conditions of oxidative stress // Free Radic. Biol. Med. 1999. V. 26. № 3-4. P. 463-471.
  8. Lloyd S., Chang A., Taylor F., Janzen E., McCay P. Free radical and septic shock in primates: the role of tumor necrosis factor // Free Radic. Biol. Med. 1993. V. 14. P. 233-242.
  9. Kratzer E., Tian Y., Sarich N., Wu T., Meliton A., Leff A., Birukova A.A. Oxidative stress contributes to lung injury and barrier dysfunction via microtubule destabilization // Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 2012. V. 47. № 5. P. 688-697.
  10. Ashtiani H.R.A., Khoyi S.H., Rahbar M., Hedayati M., Hossein Rastegar H., Malekpour A. Effect of lipopolysaccharide (LPS) extracted from Salmonella enteritidis on production of hydrogen peroxide and total antioxidant capacity in fibroblast cells // Ann. Biol. Res. 2013. V. 4. № 1. P. 1-6.
  11. Moreira da Silva F., Marques A., Chaveiro A. Reactive oxygen species: a double-edged sword in reproduction // The Open Veterinary Science Journal. 2010. V. 4. P. 127-133.
  12. Lopes S., Jurisicova A., Sun J.G., Casper R.F. Reactive oxygen species: potential cause for DNA fragmentation in human spermatozoa // Hum. Reprod. 1998. V. 13. № 4. P. 896-900.
  13. Czermak B.J., Breckwoldt M., Ravage Z.B., Huber-Lang M., Schal H., Bless N.M., Friedl H.P., Ward P.A. Mechanisms of enhanced lung injury during sepsis // Am. J. Pathol. 1999. V. 154. № 4. P. 1057-1065.
  14. Matthay M.A., Folkesson H.G., Clerici C. Lung epithelial fluid transport and the resolution of pulmonary edema // Physiol. Rev. 2002. V. 82. № 3. P. 569-600.
  15. Abraham E., Singer M. Mechanisms of sepsis-induced organ dysfunction // Crit. Care Med. 2007. V. 35. P. 2408-2416.
  16. Angus D.C., Linde-Zwirble W.T., Lidicker J., Clermont G., Carcillo J., Pinsky M.R. Epidemiology of severe sepsis in the United States: analysis of incidence, outcome, and associated costs of care // Crit. CareMed. 2001. V. 29. № 7. P. 1303-1310.
  17. Martin G.S., Mannino D.M., Eaton S., Moss M. The epidemiology of sepsis in the UnitedStates from 1979 through 2000 // New Engl. J. Med. 2003. V. 348. № 16. P. 1546-1554.
  18. Russell J.A. Management of sepsis // New Engl. J. Med. 2006. V. 355. № 16. P.1699-1713.
  19. Hsu H-Y., Wen M-H. Lipopolysaccharide-mediated reactive oxygen species and signal transduction in the regulation of interleukin-1 gene expression // J. Biol. Chem. 2002. V. 277. № 25. P. 22131-22139.
  20. Bowler R.P., Arcaroli J., Crapo J.D., Ross A., Slot J.W., Abraham E. Extracellular superoxide dismutase attenuates lung injury after hemorrhage // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001. V. 164. P.290-294.
  21. Maksimenko A.V. Experimental antioxidant biotherapy for protection of the vascular wall by modified forms of superoxide dismutase and catalase // Curr. Pharm. Design. 2005. V. 11. № 16. P. 2007-2016.
  22. Maksimenko A.V., Vavaev A.V. Antioxidant enzymes as potential targets in cardioprotection and treatment of cardiovascular diseases. Enzyme antioxidants: the next stage of pharmacological counterwork to oxidative stress // Heart International. 2012. V. 7. P. e3 (14-19) (http://www.pagepress.org/journals/index.php/hi).
  23. Maksimenko A.V., Golubykh V.L., Tischenko E.G. The combination of modified antioxidant enzymes for anti-thrombotic protection of vascular wall: the significance of covalent connection of superoxide dismutase and catalase activities // J. Pharmacy Pharmacol. 2004. V.56. P.1463-1468.
  24. Максименко А.В., Тищенко Е.Г.Модификация каталазы хондроитинсульфатом // Биохимия. 1997. Т. 62. № 10. С. 1364-1368.
  25. МаксименкоА.В., ВаваевА.В., БурячковскаяЛ.И., МохВ.П., УчительИ.А., ЛакомкинВ.П., КапелькоВ.И. ТищенкоЕ.Г.Биофармакология ферментных конъюгатов: вазопротекторная активность супрамолекулярного конъюгата супероксиддисмутаза-хондроитинсульфат-каталаза // ActaNaturae. 2010. Т. 2. № 4. С. 90-103.
  26. Kustanova G.A., Murashev A.N., Karpov V.L., Margulis B.A., Guzhova I.V., Prokopenko I.R., Grachev S.V., Evgen-ev M.B. Exogenous heart shock protein 70 mediates sepsis manifestation and decreases the mortality rate in rats // Cell Stress & Chaperones. 2006. V. 11. № 2. P. 276-286.
  27. Yilmas M.S., Millington W.R., Feleder C. The preoptic anterior hypothalamic area mediates initiation of the hypotensive response induced by LPS in male rats // Shock. 2008. V. 29. № 2. P. 232-237.
  28. Ваваев А.В., Тищенко Е.Г., Мох В.П., Максименко А.В. Влияние перекиси водорода на тонус артериального фрагмента сосуда крысы и его антиоксидантная защита производными каталазы и супероксиддисмутазы // Технологии живых систем. 2009. Т. 6. № 3. С. 26-32.
  29. Miroshnitchenko O., Prokopenko O., Palnitkar U., Kister I., Powell W.S., Inouye M. Endotoxemia in transgenic mice overexpressing human gkutathi­one peroxidases // Circ. Res. 2000. V. 87. P. 289-295.
  30. Reddy A.T., Lakshmi S.P., Kleihenz J.M., Sutliff R.L., Hart C.M., Reddy R.C. Endothelial cell peroxisome proliferators-activated receptory reduces endotoxe­xemic pulmonary inflammation and injury // J. Immunol. 2012. V. 189. №  11. P. 5411-5420.
  31. Menden H., Tate E., Hogg N., Sampath V. LPS-mediated endothelial activation in pulmonary endothelial cells: role of Nox2 - dependent IKK-β phosphorylation // Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol. 2013. V. 304. № 6. P. 445-455.
  32. Максименко А.В.Внеклеточное оксидативное поражение сосудистой стенки и ее ферментативная антиоксидантная защита // Химико-фармацевтический журнал. 2007. Т. 41. № 5. С. 3-12.
  33. Aird W.C.Endothelium as a therapeutic target in sepsis // Curr. Drug Targets. 2007. V. 8. № 4. P. 501-507.