350 руб
Журнал «Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии» №7 за 2013 г.
Статья в номере:
Исследование особенностей метаболизма фотомодифицированных лимфоцитов, инкубированных в нормо- и гипергликемической среде
Ключевые слова: лимфоциты УФ-свет сукцинатдегидрогеназа цитохром с оксидаза
Авторы:
О.В. Земченкова - ассистент, кафедра биохимии, Воронежская государственная медицинская академия им. Н.Н. Бурденко. Е-mail: zov-bio@mail.ru О.В. Башарина - к.б.н., доцент, кафедра биофизики и биотехнологии, Воронежский государственный университет. Е-mail: bov-bio@yandex.ru С.И. Позднякова - студент, кафедра биофизики и биотехнологии, биолого-почвенный факультет, Воронежский государственный университет. E-mail: cocodrilla@mail.ru В.Г. Артюхов - д.б.н., профессор, зав. кафедрой биофизики и биотехнологии, Воронежский государственный университет. E-mail: avg@main.vsu.ru
Аннотация:
Исследовано влияние УФ-света (240...390 нм) в дозах 151 и 755 Дж/м2 на активность окислительно-восстановительных ферментов: цитохром с оксидазы (ЦО) и сукцинатдегидрогеназы (СДГ) лимфоцитов, инкубированных в питательной среде с физиологическим и повышенным содержанием глюкозы. Установлено, что фотоинактивация ферментов непосредственно после облучения, приводящая к снижению количества АТФ в клетках, сменяется повышением активности исследуемых ферментов в ходе суточной инкубации лимфоцитов. В случае инкубации УФ-облученных клеток в гипергликемической питательной среде интенсивность катаболических реакций в них возрастает относительно клеток, инкубированных в среде с нормальным содержанием глюкозы.
Страницы: 54-58
Список источников

  1. Карандашов В.И., Петухов Е.Б., Зродников В.С. Фототерапия. М.: Медицина. 2001. 392 с.
  2. RethM.Hydrogenperoxideassecondmessengerinlymphocyteactivation // NatureImmunol. 2002. V. 3. № 12. P. 1129-1134.
  3. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука. 1972. 252 с.
  4. Дубинина Е.Е.Роль активных форм кислорода в качестве сигнальных молекул в метаболизме тканей при состоянии окислительного стресса // Вопросы медицинской химии. 2001. Т. 47. № 6. С. 561-581.
  5. Гордеева А.В., Звягильская Р.А., Лабас Ю.А. Взаимосвязь между активными формами кислорода и кальцием в живых клетках // Биохимия. 2003. Т. 68. № 10. C. 1318-1322.
  6. Грязева Н.И., Барыкина Н.Н., Шурлыгина А.В., Колпаков В.Г., Робинсон М.В., Труфакин В.А. Различия в составе клеточных элементов крови и активности лимфоцитарных дегидрогеназ у крыс с генетическими различиями нейроэндокринного статуса // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1998. Т. 125. С. 555-557.
  7. Северин Е.С., Северин С.Е., Катуков В.Ю., Муйжнек Е.Л. Проблемы избирательной регуляции клеточной активности: от фундаментальных основ к практическим результатам // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 1998. № 1. С. 6-15.
  8. Игнатьева С.Н., Кубасов Р.В. Особенности изменения ферментного статуса лейкоцитов студентов в течение года // Клиническая лабораторная диагностика. 2009. № 1. С. 36-41.
  9. Maciver N.J., Jacobs S.R., Wieman H.L., Wofford J.A., Coloff J.L., Rathmell J.C. Glucose metabolism in lymphocytes is regulated process with significant effects on immune cell function and survival // J. Leukoc. Biol. 2008. V. 84. № 4. P. 949-957.
  10. Прохорова М.И. Методы биохимических исследований: липидный и энергетический обмен. Л.: Изд-во ЛГУ. 1982. 272 с.
  11. Cooper T.G.,Beevers H.Mitochondria and glyoxysomes from castor been endosperm. Enzyme constitutents and catalytic capacity // J. Biol. Chem. 1969. V. 244. P. 3507-3513.
  12. ДетлафТ.А.Методыбиологииразвития. М.: Наука. 1974. 619с.
  13. Marko A.J., Miller R.A., Kelman A., Frauwirth K.A. Induction of glucose metabolism in stimulated T lymphocytes is regulated by mitogen-activated protein kinase signaling // PLoS One. 2010. V. 5. № 11. P. 15-25.
  14. Артюхов В.Г., Земченкова О.В., Башарина О.В., Ким Я.В. Особенности метаболизма УФ-облученных лимфоцитов // Радиационная биология. Сер. Радиоэкология. 2011. Т. 51. № 2. С. 252-257.
  15. Andreyev A.Y., Kushnareva Y.E., Starkov A.A.Mitochondrial metabolism of reactive oxygen species // Biochem. 2005. V. 70. № 2. P. 200-214.
  16. Virag L., Salzman A.L., Szabo C. Poly(ADP-ribose) synthetase activation mediates mitochondrial injury during oxidant-induced cell death // J. Immunol. 1998. V. 161. P. 3753-3759.
  17. Colussi C., Albertini M.C., Coppola S., Rovidati S., Galli F., Ghibelli L. H2O2-induced block of glycolysis as an active ADP-ribosylation reaction protecting cells from apoptosis // FASEB J. 2000. V. 14. № 14. P. 2266-2276.