Название статьи или книги, фамилия автора, DOI

Влияние комбинаций пропофола и изофлурана с трамадолом и без него в сравнении с тилетамин-золазепамом и ксилазином на основные физиологические параметры хорьков

Д.Ю. Акимов1, М.Н. Макарова2, С.В. Гущина3, Д.С. Ваганова4, Т.В. Кожевникова5

научная статья УДК 615.03 Страницы: 86-98 doi.org/10.18127/j20700997-202503-09

  1. 1 АО «НПО «ДОМ ФАРМАЦИИ» (Ленингр. обл., Всеволожский р–н, г.п. Кузьмоловский, Россия); ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины» (Санкт-Петербург, Россия)
  2. 2,3,4,5 АО «НПО «ДОМ ФАРМАЦИИ» (Ленингр. обл., Всеволожский р–н, г.п. Кузьмоловский, Россия)

Аннотация

Постановка проблемы. Важным аспектом доклинического исследования является необходимость выбора оптимального анестетика для минимизации рисков и определения наиболее эффективных схем анестезии. Основные рекомендации по анестезии хорьков сводятся к требованиям следовать протоколам, аналогичным для собак и кошек, не учитывая их видовые особенности. В свою очередь, анестетики и анальгетики могут влиять на показатели, получаемые в ходе доклинических исследований, поэтому важно уметь дифференцировать влияние препаратов для наркотизации от действия кандидата в лекарственные средства.

Цель работы – изучение влияния комбинации препаратов пропофол и изофлуран, трамадол, пропофол и изофлуран в сравнении с комбинацией ксилазин и тилетамин-золазепам на основные физиологические функции хорьков.

Результаты. Проведено сравнение существующих комбинаций анестетиков, таких как пропофол, изофлуран, трамадол, которые часто применяются в ветеринарной практике, а также ксилазин, тилетамин, золазепам. Пропофол вводился внутривенно, изофлуран подавался ингаляционно, трамадол – внутримышечно. Комбинация тилетамин–золазепам и ксилазин вводилась внутримышечно.

Показатели глюкозы во время анестезии находились в пределах референсных значений (5,0…7,1 ммоль/л). Также отмечается, ни на одной комбинации не наблюдалось влияния на температуру тела, ее значения были в пределах нормы. Значения SpO2 у животных на комбинациях трамадол, пропофол, изофлуран у самцов и самок составляли от 97–100 %, на комбинации ксилазин, тилетамин – золазепам 93–96 %. Показатель ETCO2 в комбинации трамадол, пропофол, изофлуран у самцов и самок находился на уровне 28…29 мм рт. ст. Уровень частоты дыхательных движений (ЧДД) во всех комбинациях находился в пределах референсных интервалов 27–50 вдохов в минуту. Гипотензивное действие оказывала комбинация ксилазин, тилетамин-золазепам ♂ 107/81 мм рт. ст., ♀ 94/57 мм рт. ст. Комбинации пропофол, изофлуран, трамадол и пропофол, изофлуран клинически значимо не повлияли на частоту сердечных сокращений (ЧСС) (пропофол, изофлуран ♂ 244 уд/мин.,
♀ 247 уд/мин., трамадол, пропофол, изофлуран ♂ 242 уд/мин., ♀ 267 уд/мин.), тогда как комбинация ксилазин, тилетамин-золазепам приводила к выраженному снижению ЧСС. На основании проведенного исследования можно утверждать, что как у самцов, так и у самок в группах пропофол, изофлуран и пропофол, изофлуран, трамадол имеется сходство по параметрам
R-Rmin, R-Rmax, R-Rср, P, P-R (P-Q), Q-T, Q-Tc, но отмечается статистически значимое увеличение комплекса QRS в группе трамадол, пропофол, изофлуран по отношению к группам пропофол, изофлуран и ксилазин, тилетамин-золазепам, что свидетельствует об угнетении сердечно-сосудистой системы.

Практическая значимость. Полученные данные могут быть применены в сфере экспериментальной фармакологии, связанной с использованием лабораторных хорьков, и помогут дифференцировать изменения, вызванные исследуемым лекарственным средством, от влияния анестезии.

Поступила
12.09.2024
Одобрена
07.05.2025
Принята
19.08.2025

Для цитирования

Акимов Д.Ю., Макарова М.Н., Гущина С.В., Ваганова Д.С., Кожевникова Т.В. Влияние комбинаций пропофола и изофлурана с трамадолом и без него в сравнении с тилетамин-золазепамом и ксилазином на основные физиологические параметры хорьков // Технологии живых систем. 2025. № 3. С. 86–98. DOI: https://doi.org/10.18127/j20700997-202503-09

Список источников
  1. Yeates T. Studies in the Embryology of the Ferret // Journal of Anatomy and Physiology. 1911. V. 45. № Pt 4. P. 319.
  2. Smith R.E., Choudhary S., Ramirez J.A. Ferrets as Models for Viral Respiratory Disease // Comparative Medicine. 2023. V. 73. № 3. P. 187–193. DOI: 10.30802/AALAS-CM-22-000064
  3. Pramod R.K. et al. Care, management, and use of ferrets in biomedical research // Laboratory Animal Research. 2024. V. 40. № 1. P. 10. DOI: 10.1186/s42826-024-00197-4
  4. Kapaldo N., Eshar D. Ferret sedation and anesthesia // Veterinary Clinics: Exotic Animal Practice. 2022. V. 25. № 1. P. 273–296. DOI: 10.1016/j.cvex.2021.08.006
  5. Мазукина Е.В. Оценка использования коррекции интервала QT (QTc) и референтные интервалы ЭКГ у интактных и наркотизированных хорьков // Лабораторные животные для научных исследований. 2024. № 2. С. 73–89. DOI: 10.57034/2618723X-2024-02-07
  6. Гуляева А.С. Электрокардиограмма домашнего хорька (Mustela putorius furo) при разных положениях тела // Ветеринария. 2017. № 10. С. 55–59.
  7. Пономарёва Т.Ю., Руколь В.М. Особенности кастрации (стерилизации) хорьков // Ветеринарная хирургия: от истока к современности: материалы Междунар. научно-практ. конференции, посвященной 110-летию со дня рождения профессора, доктора ветеринарных наук Г.С. Мастыко, Витебск, 03-05 ноября 2022. Витебск: Учреждение образования «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины. 2022. С. 149–151.
  8. Johnson-Delaney C., Lennox A. Analgesia and anesthesia in ferrets // Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. Academic Press. 2023. P. 543–557. DOI: 10.1016/B978-0-12-822215-7.00026-3
  9. Tomaselli L. et al. Anesthesia suppresses gastric myoelectric power in the ferret // Neurogastroenterol Motil. 2024. V. 36. № 3. Р. e14749. DOI: 10.1111/nmo.14749
  10. O'Dwyer L. Understanding capnography // The Vet Times. 2015. V. 28. № 1. P. 1–11.
  11. Schernthaner A. et al. Medetomidine/midazolam/ketamine anaesthesia in ferrets: effects on cardiorespiratory parameters and evaluation of plasma drug concentrations // Vet. Anaesth. Analg. 2011. V. 38. № 5. P. 439–450. DOI: 10.1111/j.1467-2995.2011.00635.x
  12. Koster F. et al. Exhaled aerosol transmission of pandemic and seasonal H1N1 influenza viruses in the ferret // PLoS One. 2012. V. 7. № 4. P. e33118. DOI: 10.1371/journal.pone.0033118
  13. Van Zeeland Y.R.A. et al. Non-invasive blood pressure measurement in ferrets (Mustela putorius furo) using high definition oscillometry // The Veterinary Journal. 2017. V. 228. P. 53–62. DOI: 10.1016/j.tvjl.2017.10.019
  14. Van Zeeland Y.R.A., Schoemaker N.J. Ferret Cardiology // Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2022. V. 25. P. 541–562. DOI: 10.1016/j.cvex.2022.01.007
  15. Agudelo C.F., Jekl V., Hauptman K. et al. A case of a complete atrioventricular canal defect in a ferret // BMC Vet. Res. 2021. V. 17. P. 1–5. DOI: 10.1186/s12917-020-02736-2
  16. Акимов Д.Ю. и др. Влияние атропина на показатели крови лабораторных грызунов // Технологии живых систем. 2024. T. 21. № 2. С. 5−17. DOI: 10.18127/j20700997-202402-01
  17. Акимов Д.Ю. и др. Влияние комбинации ксилазина с тилетамином + золезапамом при достижении разной глубины анестезии на некоторые показатели кроликов // Технологии живых систем. 2024. T. 21. № 1. С. 63–74. DOI: 10.18127/j20700997-202401-06
  18. Schiemsky T. et al. An unconscious man with profound drug-induced hypoglycaemia // Biochem. Med. (Zagreb). 2020. V. 30. № 1. P. 010802. DOI: 11613/BM.2020.010802
  19. Lumsden J.H., Mullen K. On establishing reference values // Canadian Journal of comparative medicine: Revue canadienne de medicine. 1978. V. 42. № 3. P. 293–301.
  20. Arnold J.E., et al. Principles of Quality Assurance and Standards for Veterinary Clinical Pathology (version 3.0): Developed by the American Society for Veterinary Clinical Pathology’s (ASVCP) Quality Assurance and Laboratory Standards Committee // Vet. Clin. Pathol. 2019. V. 48. № 4. P. 542–618. DOI: 10.1111/vcp.12810
  21. Консультант GLP-Planet 2022. Мнение фармацевтической отрасли. – Санкт-Петербург: Акционерное общество «Научно-производственное объединение «ДОМ ФАРМАЦИИ». 2022. 248 с. DOI:10.57034/978-5-6048955-0-4
  22. Тихонова Г.А. Биомаркеры как инструмент медико-биологического мониторинга и контроля (Обзор литературы. Часть 1) // Технологии живых систем. 2023. Т. 20. № 2. С. 18–26. DOI: 10.18127/j20700997-202302-02
  23. Тихонова Г.А. Биомаркеры как инструменты медико-биологического мониторинга и контроля (Обзор литературы. Часть 2) // Технологии живых систем. 2023. Т. 20. № 4. С. 5–18. DOI: 10.18127/j20700997-202304-01
  24. Schiemsky T. et al. An unconscious man with profound drug-induced hypoglycaemia // Biochem. Med. (Zagreb). 2020. V. 30. № 1. Р. 010802. DOI: 10.11613/BM.2020.010802
  25. Goich M., Bascuñán A., Faúndez P., Siel D. Comparison of analgesic efficacy of tramadol, morphine and methadone in cats undergoing ovariohysterectomy // J. Feline Med. Surg. 2024. V. 26. № 3. DOI: 10.1177/1098612X231224662
  26. Margeti C. et al. The Effect of a Subsequent Dose of Dexmedetomidine or Other Sedatives following an Initial Dose of Dexmedetomidine on Electrolytes, Acid-Base Balance, Creatinine, Glucose, and Cardiac Troponin I in Cats: Part II. // Vet. Sci. 2024. V. 11. № 4. Р. 143. DOI: 10.3390/vetsci11040143
  27. Акимов Д.Ю. и др. Влияние трамадола при однократном введении на клинико-лабораторные показатели экспериментальных животных // Ветеринарный фармакологический вестник. 2024. № 1(26). С. 8–41. DOI 10.17238/issn2541-8203.2024.1.8